Маркеры апоптоза – молекулярные мишени токсического действия сернистого иприта
- Авторы: Роговская Н.Ю.1, Бабаков В.Н.1
-
Учреждения:
- ФГУП «НИИ гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
- Выпуск: № 5 (2017)
- Страницы: 28-34
- Раздел: Статьи
- Статья опубликована: 28.10.2017
- URL: https://rjpbr.com/0869-7922/article/view/641036
- DOI: https://doi.org/10.36946/0869-7922-2017-5-28-34
- ID: 641036
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Предложены клеточные in vitro тест-системы, которые позволяют определять активацию апоптоза при различных концентрациях сернистого иприта (СИ); была оценена эффективность этих тест-систем при действии N-ацетилцистеина (NAC). В качестве показателей токсического действия СИ оценивали как интегральную цитотоксичность, так и активацию молекулярных мишеней: поли(АДФ-рибоза)полимеразы, каспазы-3, каспазы-9, транскрипционного фактора p53 и других маркеров апоптоза в экстрактах клеток человека линии SH-SY5Y при действии СИ и при совместном действии СИ и NAC. Можно выделить следующие основные мишени токсического действия СИ на клетки: каспазу-3, каспазу-9, PARP1 и транскрипционный фактор p53, который в данной системе является первичной мишенью и активируется через 6 ч после добавления токсиканта. Активные формы ферментов каспазы-3, каспазы-9 и PARP1 заметно накапливаются в клетках через 24 ч после добавления токсиканта.
Ключевые слова
Об авторах
Н. Ю. Роговская
ФГУП «НИИ гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия
В. Н. Бабаков
ФГУП «НИИ гигиены, профпатологии и экологии человека» ФМБА России
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Список литературы
- Подольская Е.П., Бабаков В.Н. Масс-спектрометрия с мягкими методами ионизации в токсикологическом анализе. Научное приборостроение. 2008; 18 (4): 5-12.
- Краснов И.А., Подольская Е.П., Гончаров Н.В. и др. Идентификация алкилированного аддукта сывороточного альбумина человека методами масс-спектрометрии. Научное приборостроение. 2008; 18 (4): 46-53.
- Nourani M.R., Mahmoodzadeh Hosseini H., Azimzadeh Jamalkandi S., Imani Fooladi A.A. Cellular and molecular mechanisms of acute exposure to sulfur mustard: a systematic review. J Recept Signal Transduct Res. 2016; 2:1-
- Debiak M., kehe k., Burkle A. Role of poly(ADP-ribose) polymerase in sulfur mustard toxicity. Toxicology. 2009; 263:20–5.
- Byrne M.P., Broomfield C.A., Stites W.E. Mustard gas crosslinking of proteins through preferential alkylation of cysteines. J Protein Chem. 1996; 15:131–6.
- Ghabili k., Agutter P.S., Ghanei M., et al. Sulfur mustard toxicity: history, chemistry, pharmacokinetics, and pharmacodynamics. Critical Rev Toxicol. 2011; 41:384–403.
- Minsavage G.D., Dillman J.F. 3rd. Bifunctional alkylating agent-induced p53 and nonclassical nuclear factor kappaB responses and cell death are altered by caffeic acid phenethyl ester: a potential role for antioxidant/electrophilic responseelement signaling. J Pharmacol Exp Ther. 2007; 321:202-12.
- Rebholz B., kehe k., Ruzicka T., Rupec R.A. Role of NF-kappaB/RelA and MAPK pathways in keratinocytes in response to sulfur mustard. J Invest Dermatol. 2008; 128(7):1626-32.
- Dillman J.F. 3rd, McGary K.L., Schlager J.J. An inhibitor of p38 MAP kinasedownregulates cytokine release induced by sulfur mustard exposure in humanepidermal keratinocytes. Toxicol In Vitro. 2004; 18(5):593-9.
- Schmidt B.Z., Lehmann M., Gutbier S., Nembo E., Noel S., Smirnova L.et al. In vitro acute and developmental neurotoxicity screening: an overview of cellular platforms and high-throughput technical possibilities. Arch Toxicol. 2016: 1-doi: 10.1007/s00204-016-1805-9
- Szymanski P., Markowicz M., MikiciukOlasik E. Adaptation of high-throughput screening in drug discovery-toxicological screening tests. Int J Mol Sci.2012; 13(1):427-
- Ozsvari B., Puskas L. G., Nagy L. I., kanizsai I., Gyuris M., Madácsi R., et al. A cell-microelectronic sensing technique for the screening of cytoprotective compounds. International journal of molecular medicine. 2010; 25(4): 525-30.
- Jayaraman A., Pike C.J. Progesterone attenuates oestrogen neuroprotection via downregulation of oestrogen receptor expression in cultured neurones. J. Neuroendocrinol. 2009; 21(1):77-
- Tarze A., Deniaud A., Le Bras M., Maillier E., Molle D., Larochette N., et al. GAPDH, a novel regulator of the pro-apoptotic mitochondrial membrane permeabilization. Oncogene. 2007; 26(18): 2606–20.
- Malaviya R., Sunil V.R., Cervelli J., Anderson D.R., Holmes W.W., Conti M.L., et al. Inflammatory effects of inhaled sulfur mustard in rat lung. Toxicol Appl Pharmacol. 2010; 248 (2):89–99.
- Ruff A.L., Dillman J.F. 3rd Signaling molecules in sulfur mustard-induced cutaneous injury. ePlasty. 2008; 8: 8-22.
- Толкач П.Г., Башарин В.А., Колобов А.А., Роговская Н.Ю., Бабаков В.Н. Влияние пептида КК1 на содержание маркеров апоптоза в головном мозге крыс после острой тяжелой интоксикации оксидом углерода. Токсикологический вестник. 2016; (3):10-4.
Дополнительные файлы
