Monocyte Subpopulations Analysis in Patients under Cardiac Surgery in Conditions of Modified Extracorporeal Circulation Using Hemodiafiltration

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

In patients undergoing cardiosurgical operations under conditions of extracorporeal circulation, continued high-volume controlled hemodiafiltration was used, the content of subpopulations of monocytes M1, M2, M3, CD4+ monocytes and total monocytes was studied in the circulation before surgery and on days 3 and 10 after it. Previously unknown data have been discovered that can be used in the diagnosis and prognosis of cardiac surgery.

About the authors

V. M. Zemskov

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Author for correspondence.
Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

R. A. Kornelyuk

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

A. V. Sharanda

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

G. P. Plotnikov

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

V. A. Popov

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

A. M. Zemskov

Burdenko Voronezh State Medical University

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Voronezh

V. S. Demidova

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

A. N. Kulikova

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

N. S. Shishkina

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

A. V. Balbutsky

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

M. S. Solovieva

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

M. N. Kozlova

Vishnevsky National Medical Research Center of Surgery

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

O. S. Vasiliev

Russian University of Sport “GTSOLIFK”

Email: arturrego@yandex.ru
Russia, Moscow

References

  1. Аникина Е.В., Цыганкова А.Р. Клеточные маркеры хронической обструктивной болезни легких от воздействия аэрозолей, содержащих наночастицы // Мед. труда пром. экол. 2020. Т. 60 (11). С. 723–726.
  2. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз, 1962. 180 с.
  3. Ганичева А.В., Ганичев А.В. Построение доверительных интервалов на основе неравенства Чебышева и рекуррентного метода // Вестн. НГУЭУ. 2022. № 1. С. 211–223. https://doi.org/10.34020/2073-6495-2022-1-211-223
  4. Григорьев Е.В., Плотников Г.П., Матвеева В.Г. и др. Способ предупреждения развития системного воспалительного ответа у кардиохирургических пациентов после искусственного кровообращения. Патент RU 2641173 C1. Заяв. 31.10.2016. Опубл. 16.01.2018.
  5. Евгина С.А., Савельев Л.И. Современные теория и практика референтных интервалов // Лаб. служба. 2019. Т. 8 (2). С. 36–44. https://doi.org/10.17116/labs2019802136
  6. Земсков В.М., Алексеев А.А., Козлова М.Н. и др. Иммунная диагностика септических осложнений при ожогах // Успехи соврем. биол. 2015. Т. 135 (6). С. 531–541.
  7. Земсков В.М., Ревишвили А.Ш., Козлова М.Н. и др. Анализ субпопуляций моноцитов при сердечно-сосудистой, ожоговой и иной патологии (классификация 2010 г.) // Мед. совет. 2023. Т. 17 (4). С. 8–17.
  8. Курбацкий А.И. Лекция 5. Доверительные интервалы. М.: МШЭ МГУ, 2020. С. 1–32.
  9. Ревишвили А.Ш., Чагирев В.Н., Плотников Г.П. и др. Способ интраоперационной стабилизации гомеостаза пациента при кардиохирургическом вмешательстве в условиях длительного искусственного кровообращения. Патент RU 2723752 C1. Заяв. 25.02.2019. Опубл. 17.06.2020.
  10. Титов Л.Б. Моноциты, макрофаги, дендритные и миелоидные супрессорные клетки: генез, классификация, иммунобиологические свойства // Весці Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі. Серыя медыцынскіх навук. 2018. Т. 15 (3). С. 363–382.
  11. Хубулава Г.Г., Марченко С.П., Дубова Е.В., Суворов В.В. Роль модифицированной ультрафильтрации в уменьшении системных проявлений воспаления в кардиохирургии // Педиатр. 2016. Т. 7 (1). С. 106–110.
  12. Ярмамедов Д.M., Липатов В.А. Метод доверительных интервалов в биологических и медицинских исследованиях // Innova. 2016. № 3 (4). С. 13–14. https://doi.org/10.21626/innova/2016.3/03
  13. Borst J., Ahrends T., Bąbała N. et al. CD4+ T cell help in cancer immunology and immunotherapy // Nat. Rev. Immunol. 2018. V. 18 (10). P. 635–647. https://doi.org/10.1038/s41577-018-0044-0
  14. Chapman C.M., Beilby J.P., McQuillan B.M. et al. Monocyte count, but not C-reactive protein or interleukin-6, is an independent risk marker for subclinical carotid atherosclerosis // Stroke. 2004. V. 35. P. 1619–1624.
  15. Crowe S., Mills J., McGrath M.S. Quantitative immunocytofluorographic analysis of CD4 surface antigen expression and HIV infection of human peripheral blood monocyte/macrophages // AIDS Res. Hum. Retroviruses. 1987. V. 3 (2). P. 135–145. https://doi.org/10.1089/aid.1987.3.135
  16. Geleziunas R., Bour S., Boulerice F. et al. Diminution of CD4 surface protein but not CD4 messenger RNA levels in monocytic cells infected by HIV-1 // AIDS. 1991. V. 5. P. 29–33. https://doi.org/10.1097/00002030-199101000-00004
  17. Graziani-Bowering G.M., Filion L.G. Down regulation of CD4 expression following isolation and culture of human monocytes // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2000. V. 7 (2). P. 182–191. https://doi.org/10.1128/CDLI.7.2.182-191.2000
  18. Graziani-Bowering G.M., Filion L.G., Thibault P., Kozlowski M. CD4 is active as a signaling molecule on the human monocytic cell line Thp-1 // Exp. Cell Res. 2002. V. 279 (1). P. 141–152. https://doi.org/10.1006/excr.2002.5581
  19. Hristov M., Schmitz S., Nauwelaers F., Weber C. A flow cytometric protocol for enumeration of endothelial progenitor cells and monocyte subsets in human blood // J. Immunol. Methods. 2012. V. 381. P. 9–13.
  20. Ji J., Sahu G.K., Braciale V.L., Cloyd M. HIV-1 induces IL-10 production in human monocytes via a CD4-independent pathway // Int. Immunol. 2005. V. 17 (6). P. 729–736. https://doi.org/10.1093/intimm/dxh252
  21. Kampalath B., Cleveland R.P., Kass L. Reduced CD4 and HLA-DR expression in neonatal monocytes // Clin. Immunol. Immunopathol. 1998. V. 87 (1). P. 93–100. https://doi.org/10.1006/clin.1997.4505
  22. Kawakami Y. Autoimmune diseases // Chiryo. 1962. V. 44. P. 2145–2154.
  23. Kazazi F., Mathijs J.M., Foley P., Cunningham A.L. Variations in CD4 expression by human monocytes and macrophages and their relationship to infection with the human immunodeficiency virus // J. Gen. Virol. 1989. V. 70 (10). P. 2661–2672. https://doi.org/10.1099/0022-1317-70-10-2661
  24. Neudorf S., DeLaat C., Jones M. Expression of the CD4 molecule on acute nonlymphocytic leukemia (ANLL) cell lines // J. Clin. Lab. Anal. 1989. V. 3 (5). P. 312–315. https://doi.org/10.1002/jcla.1860030510
  25. Pietrella D., Monari C., Retini C. et al. Cryptococcus neoformans and Candida albicans regulate CD4 expression on human monocytes // J. Infect. Dis. 1998. V. 178 (5). P. 1464–1471. https://doi.org/10.1086/314458
  26. Ruff M.R., Martin B.M., Ginns E.I. et al. CD4 receptor binding peptides that block HIV infectivity cause human monocyte chemotaxis. Relationship to vasoactive intestinal polypeptide // FEBS Lett. 1987. V. 211 (1). P. 17–22. https://doi.org/10.1016/0014-5793(87)81265-6
  27. Ruterbusch M., Pruner K.B., Shehata L., Pepper M. In vivo CD4+ T cell differentiation and function: revisiting the Th1/Th2 paradigm // Annu. Rev. Immunol. 2020. V. 38. P. 705–725. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-103019-085803
  28. Scriba A., Schneider M., Grau V. et al. Rat monocytes up-regulate NKR-P1A and down-modulate CD4 and CD43 during activation in vivo: monocyte subpopulations in normal and IFN-γ-treated rats // J. Leukoc. Biol. 1997. V. 62 (6). P. 741–752. https://doi.org/10.1002/jlb.62.6.741
  29. Szabo G., Miller C.L., Kodys K. Antigen presentation by the CD4 positive monocyte subset // J. Leukoc. Biol. 1990. V. 47 (2). P. 111–120. https://doi.org/10.1002/jlb.47.2.111
  30. Zhen A., Krutzik S.R., Levin B.R. et al. CD4 ligation on human blood monocytes triggers macrophage differentiation and enhances HIV infection // J. Virol. 2014. V. 88 (17). P. 9934–9946. https://doi.org/10.1128/jvi.00616-14

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2.

Download (85KB)
Indexing metadata
3.

Download (38KB)
Indexing metadata
4.

Download (77KB)
Indexing metadata

Copyright (c) 2023 Russian Academy of Sciences