Вопросы патогенетических взаимоотношений нейрохимических показателей при хроническом воздействии ртути

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. В настоящее время остаётся невыясненной роль нейрохимических факторов в патогенезе нарушений, обусловленных воздействием ртути.

Материал и методы. Проведено обследование 77 лиц мужского пола (средний возраст 45,4 ± 1,1 года, средний стаж - 17,1 ± 1,1 года), подвергшихся воздействию паров ртути (46 человек без патологии, 31 - с признаками нарушений в нервной системе), 36 пациентов с диагнозом хронической ртутной интоксикации (ХРИ) в отдалённом периоде. Определяли дофамин (DA), норадреналин (NA), адреналин (AD), норметанефрин (NMN), метанефрин (MN), серотонин (SER), гистамин (HIST), нейрофический фактор головного мозга (BDNF), нейротрофический фактор 3 (NT-3), цилиарный нейротрофический фактор (CNTF), нейронспецифическую енолазу. Анализ взаимосвязей признаков осуществляли посредством суммы квадрата корреляционных отношений (∑ŋ) между показателями и определением рангов влияния и зависимости каждого компонента.

Результаты. У работающих без признаков патологии ведущую роль среди катехоламинов занимал NA (∑ŋЗ/NA = 1,65), в общей системе верхнее положение принадлежало HIST (∑ŋЗ/HIST = 2,10), SER имел минимальное значение (∑ŋЗ/SER = 0). У лиц с признаками нарушений в нервной системе регуляция AD и DA осуществлялась через NMN (ŋAD/NMN = 0,29) и MN (ŋAD/MN = 0,59 и ŋDA/MN = 0,46), которые имели верхнее положение в системе (∑ŋЗ/NMN = 1,62 и ∑ŋЗ/MN = 1,92). Определяющее положение среди нейротрофических факторов принадлежало CNTF (∑ŋЗ/CNTF = 0,75). У пациентов с ХРИ лидирующее положение занимал NA (∑ŋЗ/NА = 1,48). Нижнее ранговое положение занимали SER и HIST (∑ŋЗ/SER = 0,59 и ∑ŋЗ/HIST = 0,25). Установлено наличие трёх замкнутых подсистем. В одной из них (NT-3, CNTF и BDNF) BDNF находился под влиянием остальных факторов.

Заключение. Изменения взаимозависимостей в системе нейрохимических показателей при воздействии ртути имеют лабильный характер, что определяет развитие клинических проявлений нарушений нервной системы.

Об авторах

Ирина Валерьевна Кудаева

ФГБНУ «Восточно-Сибирский институт медико-экологических исследований»

Автор, ответственный за переписку.
Email: kudaeva_irina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5608-0818

Доктор мед. наук, доцент, зам. директора по научной работе, зав. КДЛ, ФГБНУ «Восточно-Сибирский институт медико-экологических исследований», 665827, Ангарск.

e-mail: kudaeva_irina@mail.ru

Россия

О. В. Наумова

ФГБНУ «Восточно-Сибирский институт медико-экологических исследований»

Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-5353-2268
Россия

О. А. Дьякович

ФГБНУ «Восточно-Сибирский институт медико-экологических исследований»

Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-4903-1401
Россия

Л. Б. Маснавиева

ФГБНУ «Восточно-Сибирский институт медико-экологических исследований»

Email: noemail@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-1400-6345
Россия

Список литературы

  1. Рукавишников В.С., Лахман О.Л., Соседова Л.М., Шаяхметов С.Ф., Бодиенкова Г.М., Кудаева И.В. и соавт. Профессиональные нейроинтоксикации: закономерности и механизмы формирования. Медицина труда и промышленная экология. 2014; (4): 1-6.
  2. Катаманова Е.В., Шевченко О.И., Лахман О.Л., Брежнева И.А., Проскоков К.М. Нарушения высших психических функций при энцефалопатии различного генеза. Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2012; (1): 26-31.
  3. Escartin C., Pierre K., Colin A., Brouillet E., Delzescaux Th., Guillermier M., et al. Activation of astrocytes by CNTF induces metabolic plasticity and increases resistance to metabolic insults. J. Neurosci. 2007; 27(27): 7094-104. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.0174-07.2007
  4. Escartin C., Boyer F., Bemelmans A.P., Hantraye P., Brouillet E. IGF-1 exacerbates the neurotoxicity of the mitochondrial inhibitor 3NP in rats. Neurosci. Lett. 2007; 425(3): 167-72. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2007.08.031
  5. Burkhalter J., Fiumelli H., Erickson J.D., Martin J.L. A critical role for system A amino acid transport in the regulation of dendritic development by brain-derived neurotrophic factor (BDNF). J. Biol. Chem. 2007; 282(8): 5152-9. https://doi.org/10.1074/jbc.M608548200
  6. Echeverria D., Woods J.S., Heyer N.J., Rohlman D.S., Farin F.M., Bittner A.C., et al. Chronic low-level mercury exposure, BDNF polymorphism, and associations with cognitive and motor function. Neurotoxicol. Teratol. 2005; 27(6): 781-96. https://doi.org/10.1016/j.ntt.2005.08.001
  7. Судаков К.В., Умрюхин П.Е. Системные основы эмоционального стресса. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2010.
  8. Кудаева И.В., Маснавиева Л.Б., Попкова О.В., Дьякович О.А. Изменение нейрохимических показателей у лиц, экспонированных парами ртути. Медицина труда и промышленная экология. 2015; (4): 11-5.
  9. Bar-Or D., Thomas G.W., Rael L.T., Lau E.P., Winkler J.V. Asp-Ala-His-Lys (DAHK) inhibits copper-induced oxidative DNA double strand breaks and telomere shortening. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001; 282(1): 356-60. https://doi.org/10.1006/bbrc.2001.4533
  10. Гомазков О.А. Нейротрофическая регуляция и стволовые клетки мозга. М.: ИКАР; 2006
  11. Lang U.E., Bajbouj M., Gallinat J., Hellweg R. Brain-derived neurotrophic factor serum concentrations in depressive patients during vagus nerve stimulation and repetitive transcranial magnetic stimulation. Psychopharmacology (Berl). 2006; 187(1): 56-9. https://doi.org/10.1007/s00213-006-0399-y
  12. Heyer N.J., Echeverria D., Farin F.M., Woods J.S. The association between serotonin transporter gene promoter polymorphism (5-HTTLPR), self-reported symptoms, and dental mercury exposure. J. Toxicol. Environ. Health A. 2008; 71(19): 1318-26. https://doi.org/10.1080/15287390802240850
  13. Arvanian V.L., Horner P.J., Gage F.H., Mendell L.M. Chronic neurotrophin-3 strengthens synaptic connections to motoneurons in the neonatal rat. J. Neurosci. 2003; 23(25): 8706-12. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.23-25-08706.2003
  14. Русанова Д.В., Лахман О.Л. Оценка проводящих путей периферических нервов у больных с хронической ртутной интоксикацией. Медицина труда и промышленная экология. 2008; (8): 17-22
  15. Tzeng S.F., Huang H.Y. Downregulation of inducible nitric oxide synthetase by neurotrophin-3 in microglia. J. Cell Biochem. 2003; 2(90): 227-33. https://doi.org/10.1002/jcb.10658
  16. Маснавиева Л.Б., Бударина Л.А., Кудаева И.В. Показатели антиоксидантной защиты и перекисного окисления липидов у лиц с нейроинтоксикацией в отдалённом периоде. Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2010; (4): 115-8
  17. Hudgins S.N., Levison S.W. Ciliary neurotrophic factor stimulates astroglial hypertrophy in vivo and in vitro. Exp. Neurol. 1998; 150(2): 171-82. https://doi.org/10.1006/exnr.1997.6735
  18. Yokoyama H., Uchida H., Kuroiwa H., Kasahara J., Araki T. Role of glial cells in neurotoxin-induced animal models of Parkinson’s disease. Neurol. Sci. 2011; 32(1): 1-7. https://doi.org/10.1007/s10072-010-0424-0
  19. Катаманова Е.В., Кудаева И.В., Лахман О.Л., Маснавиева Л.Б., Попкова О.В. Способ дифференциальной диагностики начальных проявлений и первой степени хронической ртутной интоксикации. Патент РФ № 2513299 C1; 2014.
  20. Кудаева И.В., Дьякович О.А., Катаманова Е.В., Попкова О.В., Маснавиева Л.Б. Клинико-биохимическая характеристика нарушений нервной системы и риски основных общепатологических синдромов у работающих на ртутном производстве. Гигиена и санитария. 2015; 94(7): 68-72.
  21. Преображенская И.С. Лёгкие и умеренные когнитивные нарушения: клинические проявления, этиология, патогенез, подходы к лечению. Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2013; 5(1): 59-63. https://doi.org/10.14412/2074-2711-2013-2401
  22. Lieberman J.A., Drake R.E., Sederer L.I., Belger A., Keefe R., Perkins D., et al. Science and recovery in schizophrenia. Psychiatr. Serv. 2008; 59(5): 487-96. https://doi.org/10.1176/ps.2008.59.5.487
  23. Левин Я.И. Нейрохимическая медицина. Часть 1. Церебральные дофаминергические системы. Современная терапия психических расстройств. 2008; (1): 4-8
  24. Brindley R.L., Bauer M.B., Blakely R.D., Currie K.P.M. Serotonin and serotonin transporters in the adrenal medulla: a potential hub for modulation of the sympathetic stress response. ACS Chem. Neurosci. 2017; 8(5): 943-54. https://doi.org/10.1021/acschemneuro.7b00026
  25. Gershon M.D. Serotonin is a sword and a shield of the bowel: serotonin plays offense and defense. Trans. Am. Clin. Climatol. Assoc. 2012; 123: 268-80.
  26. Timotijević I., Stanković Ž., Todorović M., Marković S.Z., Kastratović D.A. Serotonergic organization of the central nervous system. Psychiatr. Danub. 2012; 24(S3): 326-30.
  27. Григорова О.В., Ахапкин Р.В., Александровский Ю.А. Современные представления о патогенетической терапии тревожных расстройств. Журнал неврологии и психиатрии им. C.C. Корсакова. 2019; 119(10): 111-20. https://doi.org/10.17116/jnevro2019119101111
  28. Граждан И.К., Копылов Ф.Ю., Аксенова М.Г., Барский В.И., Кириллов А.В. Патогенетические взаимосвязи особенностей личности и психических расстройств с ишемической болезнью сердца. Кардиология и сердечно-сосудистая хирургия. 2015; 8(2): 8-20. https://doi.org/10.17116/kardio2015828-20
  29. Côté F., Fligny C., Fromes Y., Mallet J., Vodjdani G. Recent advances in understanding serotonin regulation of cardiovascular function. Trends Mol. Med. 2004; 10(5): 232-8. https://doi.org/10.1016/j.molmed.2004.03.007
  30. Соседова Л.М., Кудаева И.В., Титов Е.А., Якимова Н.Л., Маснавиева Л.Б., Катаманова Е.В. Морфологические и нейрохимические эффекты в отдалённом периоде ртутной интоксикации (экспериментальные данные). Медицина труда и промышленная экология. 2009; (1): 37-42

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Кудаева И.В., Наумова О.В., Дьякович О.А., Маснавиева Л.Б., 2024


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 37884 от 02.10.2009.