Экспрессия глюкокортикоидных рецепторов в различных типах клеток гиппокампа и коры неонатальных крыс

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Глюкокортикоиды (ГК) являются критически важными регуляторами гомеостаза и функций организма. Несмотря на серьезные последствия, терапия глюкокортикоидами у новорожденных широко используется антенатально для ускорения созревания легких плода в случаях преждевременных родов. Действие ГК опосредуется через рецепторы глюкокортикоидов (ГР) ‒ лиганд-зависимые транскрипционные факторы. Многое известно об экспрессии ГР во взрослом мозге, однако, информации о специфичности и идентичности клеток, в которых экспрессируются ГР в неонатальном мозге, не так много. В этой работе мы исследовали колокализацию ГР с основными маркерами нейронов и астроцитов в мозге новорожденных крысят. Иммуногистохимически мы выявили в поле CA1 гиппокампа и энторинальной коре экспрессию ГР и маркеров кортикальных проекционных нейронов – SATB2 и NURR1; маркеров интернейронов – кальретенина и маркеров астроцитов – GFAP. Самые высокие коэффициенты колокализации наблюдались у ГР с кальретенином. С маркером проекционных нейронов, который также является фактором транскрипции, коэффициенты колокализации увеличивались до тех же значений, что и для ГР с кальретенином, через 6 ч после инъекции дексаметазона, когда ГР транслоцировались в ядро. Таким образом, анализ показал, что в мозге неонатальных крысят ГР больше локализован в нейронах, чем в астроцитах.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Д. А. Ланшаков

ФИЦ Институт цитологии и генетики СО РАН; Новосибирский государственный университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

сектор постгеномной нейробиологии, факультет естественных наук

Россия, Новосибирск; Новосибирск

У. С. Дрозд

ФИЦ Институт цитологии и генетики СО РАН; Новосибирский государственный университет

Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

сектор постгеномной нейробиологии, факультет естественных наук

Россия, Новосибирск; Новосибирск

Н. Н. Дыгало

Новосибирский государственный университет; 3ФИЦ Институт цитологии и генетики СО РАН

Email: lanshakov@bionet.nsc.ru

факультет естественных наук, лаборатория функциональной нейрогеномики

Россия, Новосибирск; Новосибирск

Список литературы

  1. Yudt M.R. and Cidlowski J.A. // Mol. Endocrin. 2002. V. 16. P. 1719–1726.
  2. Tronche F., Kellendonk C., Kretz O., Gass P., Anlag K., Orban P.C., Bock R., Klein R., and Schütz G. // Nat Genet. 1999. V. 23. P. 99–103.
  3. Kellendonk C., Tronche F., Reichardt H.M., and Schütz G. // J. Ster. Biochem. Mol. Biol. 1999. V. 69. P. 253–259.
  4. Kellendonk C., Gass P., Kretz O., Schütz G., and Tronche F. // Brain Res Bull. 2002. V. 57. P. 73–83.
  5. Doyle L.W., Ehrenkranz R.A., and Halliday H.L. // The Coch. Collab., ed., (Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd, 2014), p. CD001145.pub3.
  6. Halliday H.L., Ehrenkranz R.A., and Doyle L.W. // The Coch. Collab., ed., (Chichester, UK: John Wiley & Sons, Ltd, 2009), p. CD001146.pub2.
  7. Nguon. K., Baxter M.G., and Sajdel‐Sulkowska E.M. // The Cerebell. 2005. V. 4. P. 112–122.
  8. Bhatt A.J., Feng Y., Wang J., Famuyide M., and Hersey K. // J. of Neurosci. Res. 2013. V. 91. P. 1191–1202.
  9. Holson R.R., Gough B., Sullivan P., Badger T., and Sheehan D.M. // Neurotoxicology and Teratology. 1995. V. 17. P. 393–401.
  10. Hossain A., Hajman K., Charitidi K., Erhardt S., Zimmermann U., Knipper M., and Canlon B. // Endocrin. 2008. V. 149. P. 6356–6365.
  11. Nagano M., Ozawa H., and Suzuki H. // Neurosc. Res. 2008. V. 60. P. 364–371.
  12. Aronsson M., Fuxe K., Dong Y., Agnati L.F., Okret S., and Gustafsson J.A. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. V. 85. P. 9331–9335.
  13. Ábrahám I., Juhász G., Kékesi K.A., and Kovács K.J. // Brain Res. 1996. V. 733. P. 56–63.
  14. Takeda A., Suzuki M., Tamano H., Takada S., Ide K., and Oku N. // Neuroch. Intl. 2012. V. 60. P. 394–399.
  15. Zinchuk V. and Grossenbacher‐Zinchuk O. // CP Cell Biol. 2014. V. 62.
  16. Zinchuk V. and Grossenbacher‐Zinchuk O. // CP Cell Biol. 2011. V. 52.
  17. Adler J. and Parmryd I. // PLoS ONE. 2014. V. 9. P. e111983.
  18. Adler J. and Parmryd I. // Cyt. Pt A. 2010. V. 77A. P. 733–742.
  19. Dunn K.W., Kamocka M.M., and McDonald J.H. // Am. J. of Phys.-Cell Phys. 2011. V. 300. P. C723–C742.
  20. Varga J., Ferenczi S., Kovács K.J., Garafova A., Jezova D., and Zelena D. // PLoS ONE. 2013. V. 8. P. e72313.
  21. Bohn M.C., Dean D., Hussain S., and Giuliano R. // Dev. Brain Res. 1994. V. 77. P. 157–162.
  22. Tsiarli M.A., Paula Monaghan A., and DeFranco D.B. // Brain Res. 2013. V. 1523. P. 10–27.
  23. Vernocchi S., Battello N., Schmitz S., Revets D., Billing A.M., Turner J.D., and Muller C.P. // Mol. & Cell. Prot. 2013. V. 12. P. 1764–1779.
  24. Gutièrrez-Mecinas M., Trollope A.F., Collins A., Morfett H., Hesketh S.A., Kersanté F., and Reul J.M.H.M. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. V. 108. P. 13806–13811.
  25. Papadopoulos A., Chandramohan Y., Collins A., Droste S.K., Nutt D.J., and Reul J.M.H.M. // Eur. Neuropsych. 2011. V. 21. P. 316–324.
  26. Trollope A.F., Gutièrrez-Mecinas M., Mifsud K.R., Collins A., Saunderson E.A., and Reul J.M.H.M. // Exp. Neurol. 2012. V. 233. P. 3–11.
  27. Ben-Ari Y. // Nat Rev Neurosci. 2002. V. 3. P. 728–739.
  28. Lanshakov D.A., Sukhareva E.V., Kalinina T.S., and Dygalo N.N. // Neur. of Dis. 2016. V. 91. P. 1–9.
  29. Britanova O., Akopov S., Lukyanov S., Gruss P., and Tarabykin V. // Eur J of Neurosc. 2005. V. 21. P. 658–668.
  30. Baranek C., Dittrich M., Parthasarathy S., Bonnon C.G., Britanova O., Lanshakov D., Boukhtouche F., Sommer J.E., Colmenares C., Tarabykin V., and Atanasoski S. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012. V. 109. P. 3546–3551.
  31. Alcamo E.A., Chirivella L., Dautzenberg M., Dobreva G., Farinas I., Grosschedl R., and McConnell S.K. // Neur. 2008. V. 57. P. 364–377.
  32. Britanova O., De Juan Romero C., Cheung A., Kwan K.Y., Schwark M., Gyorgy A., Vogel T., Akopov S., Mitkovski M., Agoston D., Šestan N., Molnár Z., and Tarabykin V. // Neur. 2008. V. 57. P. 378–392.
  33. Bae E.-J., Lee H.-S., Park C.-H., and Lee S.-H. // FEBS Let. 2009. V. 583. P. 1505–1510.
  34. Perlmann T. and Wallén-Mackenzie Å. // Cell Tissue Res. 2004. V. 318. P. 45–52.
  35. Hoerder-Suabedissen A., Oeschger F.M., Krishnan M.L., Belgard T.G., Wang W.Z., Lee S., Webber C., Petretto E., Edwards A.D., and Molnár Z. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2013. V. 110. P. 3555–3560.
  36. Hoerder-Suabedissen A. and Molnár Z. // Cereb. Cort. 2013. V. 23. P. 1473–1483.
  37. Oeschger F.M., Wang W.-Z., Lee S., García-Moreno F., Goffinet A.M., Arbonés M.L., Rakic S., and Molnár Z. // Cereb. Cort. 2012. V. 22. P. 1343–1359.
  38. Tolner E.A., Sheikh A., Yukin A.Y., Kaila K., and Kanold P.O. // J. Neurosci. 2012. V. 32. P. 692–702.
  39. Viswanathan S., Bandyopadhyay S., Kao J.P.Y., and Kanold P.O. // J. Neurosci. 2012. V. 32. P. 1589–1601.
  40. Friauf E., McConnell S., and Shatz C. // J. Neurosci. 1990. V. 10. P. 2601–2613.
  41. McConnell S., Ghosh A., and Shatz C. // J. Neurosci. 1994. V. 14. P. 1892–1907.
  42. McConnell S.K., Ghosh A., and Shatz C J. // Sci. 1989. V. 245. P. 978–982.
  43. Wang Z., Benoit G., Liu J., Prasad S., Aarnisalo P., Liu X., Xu H., Walker N.P.C., and Perlmann T. // Nat. 2003. V. 423. P. 555–560.
  44. Yu S., Yang S., Holsboer F., Sousa N., and Almeida O.F.X. // PLoS ONE. 2011. V. 6. P. e22419.
  45. Wyrwoll C.S., Holmes M.C., and Seckl J.R. // Front in Neuroendo. 2011. V. 32. P. 265–286.
  46. Rosewicz S., McDonald A.R., Maddux B.A., Goldfine I.D., Miesfeld R.L., and Logsdon C.D. // J. of Biol. Chem. 1988. V. 263. P. 2581–2584.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Схема эксперимента. Стрелкой обозначен забор материала.

Скачать (58KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Экспрессия ГР в мозге неонатальных крысят на 3 день жизни. ГР – зеленый, Alexa 488. На панорамных изображениях окрашивания по ГР (1А) область СА1 гиппокампа и энторинальная кора отмечены белыми рамками. Шкала 500 мкм.

Скачать (544KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Изображения двойного иммунофлуоресцентного окрашивания ГР (зеленый, Alexa 488) и маркеров клеточных типов (красный, Alexa 568), снятые при помощи объектива с высокой числовой апертурой и 40-кратным увелечением в области СА1 гиппокампа (а) и энторинальной коре (б). Места колокализации отмечены белыми треугольниками. Шкала 50 мкм.

Скачать (656KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Изображения двойного иммунофлуоресцентного окрашивания ГР (зеленый, Alexa 488) и маркеров клеточных типов (красный, Alexa 568), снятые при помощи объектива с высокой числовой апертурой и 40-кратным увелечением в энторинальной коре до (а) и после (б) введения DEX. ГР транслоцировались в ядро клетки через 6 часов после введения DEX в энторинальную кору. Шкала 50 мкм.

Скачать (779KB)
Метаданные

© Российская академия наук, 2024